前一段时间听了干细胞老师的课，把他的胸腹水细胞学制作经验在这里给大家分享，叙述的可能不是太完整，有不当之处请大家指出。
1.把标本静置沉淀后倾去上方液体。
2.剩下的标本离心。
3.倾去离心管中的液体，用棉棒轻刮试管底部沉淀物（血块上方）。
4.在干净的玻片上涂片，稍晾（玻片上的水分稍干，但不能干片）入92％酒精固定。
5.染色。
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我的方法是：
1.把标本静置沉淀后倾去上方液体。
2.剩下的标本离心。
3.倾去离心管中的液体，用卫生纸吸去试管口的水分。
4.用吸管吸取试管底部沉淀物。在干净的玻片上涂片，立即放入92％酒精固定。

    两位老师的好方法我都用过，感觉细胞量多时用棉签轻印在玻片上分布更均匀一些，细胞量不多时没什么区别。

请问丁老师：你说的方法涂完片子直接固定，那样的话细胞不会脱落吗？我一般都是干燥一会。另外我有时候涂的片子后了的话我喜欢再推个片子，这样片子薄一些也好看，不知道这样有影响吗？

只要你离心后吸干管内的水份，涂出的片子立即固定就不会脱落。

固定多长时间为好？

我想请问一下前辈们,胸腹水细胞学的时候,我经常会遇到一些离心后试管里有很多血液,或者有时候蛋白很多,这样涂片很不方便,有什么办法可以除去这些血液或者蛋白呢???有时候送检来的标本本身已经凝结了,液体不容易倒出来,请问一下高手们,你们是用什么办法处理那些已经凝结的液体的??怎么样才能够防止液体凝结呢???希望前辈们指点一下!

红细胞可以加等量蒸流水离心，取沉渣，就可以破坏红细胞

怎么是管底的???
我们老师说是上方清凉液体和下面沉淀之间的那层白色的东西

我想请问各位老师，此类的片子要不要作为档案片保存？谢谢